DYFAMED

DYNAPROC - ROSETTE (30/04/95 au 02/06/95)

Valérie ANDERSEN

 

Données ZOOPLANCTON : Valérie ANDERSEN


1 - Engins utilisés, position géographique et dates des mesures

 

Leg 2 et Leg 4

* Rosette avec 12 bouteilles Niskin

Point Central (43°25.2'N, 7°51.8E)

9 à 12 profondeurs échantillonnées dans la colonne d’eau 0-100 m

échantillon tamisé sur une soie de 50 :m

* filet WP-II (maille 200 :m)

Point Central ou à moins de 1 mille marin du Point Central

traits de filets de jour et de nuit dans la colonne d’eau 0-200 m

* Filet à nappes Bioness (maille 500 :m)

Point Central ou à moins de 3 milles marins du Point Central

traits de filets de jour et de nuit dans la colonne d’eau 0-1000 m découpée en 9 tranches

 

* Dates et heures (TU) des mesures

Pour la rosette et le WP-II, les heures correspondent aux heures de début de remontée.

 

Leg 2

Leg 4

Bouteilles Niskin (0-100 m)

12/05

12/05

13/05

13/05

14/05

15/05

16/05

 

05.36

14.29

01.01

06.42

14.14

10.17

12.40

26/05

27/05

29/05

29/05

29/05

30/05

31/05

31/05

01/06

12.56

10.19

00.53

14.32

23.57

13.50

14.29

18.37

01.23

WP-II (0-200 m)

13/05

14/05

14/05

16/05

16/05

20.55

15.07

23.36

00.47

05.30

27/05

28/05

30/05

30/05

30/05

01/06

14.39

11.03

01.48

23.09

23.45

11.33

Bioness (0-980 m)

13/05

15/05

16/05

 

12.48-13.37

22.02-22.50

08.45-09.32

26/05

26-27/05

29/05

01/06

11.45-12.34

23.18-00.15

08.30-09.29

08.17-09.18

 

 

2 - Types de données et fichiers

 

Concentrations des principales espèces de zooplancton échantillonnées (voir liste plus loin) : abondance totale dans la colonne d’eau échantillonnée et distribution verticale.

 

Dans les fichiers les dates correspondent à des dates décimales, avec 1=1er mai à 0h et 32=1er juin à 0h.

 

* Abondance totale dans la colonne d’eau échantillonnée

- dynazoo-densite-niskin.xls

résultats obtenus avec les bouteilles Niskin

unités : 103 individus par m²

colonne 1 : numéro de la CTD

colonne 2 : date décimale

colonne 3 : profondeur de la colonne d’eau échantillonnée (0-90 ou 0-100 m)

colonnes 4 à fin : densité des organismes

- dynazoo-densite-wp.xls

dynazoo-densite-bioness-1.xls (copépodes)

dynazoo-densite-bioness-2.xls (macroplancton, micronecton)

unités : nombre d’individus par m²

colonne 1 : date décimale

colonnes 2 à fin : densité des organismes

 

* Distribution verticale des organismes

- Bouteilles niskin : 6 fichiers

dynazoo-vertic-calanoid.xls

dynazoo-vertic-euphau-n.xls

dynazoo-vertic-microsetella.xls

dynazoo-vertic-nauplii.xls

dynazoo-vertic-oithona.xls

dynazoo-vertic-radiolaire.xls

La 1ère ligne indique la date décimale de l’échantillonnage.

colonnes impaires : profondeurs échantillonnées

colonnes paires : abondance des individus (nombre d’individus par m3)

- Bioness

Distributions moyennes de jour et de nuit des espèces principales

dynazoo-vertic-bioness-1.xls : copépodes

dynazoo-vertic-bioness-1.xls : macroplancton

dynazoo-vertic-bioness-1.xls : copépodes (stades de développement)

colonne 1 : limites des couches échantillonnées

colonne 2 à fin : abondance des individus (nombre d’individus par 1000 m3)

 

 

3 - Liste des espèces et abréviations utilisées

 

Les stades de développement ont été distingués pour certaines des espèces et sont abrégés ainsi: c1, c2, c3, c4 et c5 pour les copépodites, f et m pour les femelles et les mâles.

 

* Bouteilles Niskin

Calanoids (copepodites) = calanoid

Copepod nauplii = nauplii

Euphausiid nauplii = euphau-n

Microsetella spp.

Oithona spp.

Radiolarians

 

* WP-II

Comme abréviation, le nom de genre a été utilisé (sauf indication contraire).

Centropages typicus

Clausocalanus spp.

Oithona helgolandica

Pleuromamma gracilis = Pleuromamma-g

 

* Bioness : Copépods

Calanus helgolandicus

Centropages typicus

Chridius poppei

Euchaeta acuta

Euchirella rostrata

Gaetanus kruppi

Heterorhabdus spp.

Mesocalanus tenuicornis

Monacilla typica

Neocalanus gracilis

Pleuromamma abdominalis = Pleuromamma-a

Pleuromamma gracilis = Pleuromamma-g

 

* Bioness : macroplancton et micronecton

Cavolinia inflexa

Chelophyes appendiculata

Cyclothone braueri = Cyclothoneb

Cyclothone pygmaea = Cyclothonep

Euphausia krohni

Lensia conoidea

Meganyctiphanes norvegica

                = Meganyctiphanes- s (small # 7 mm)

                = Meganyctiphanes- l (large > 7 mm)

Nematoscelis megalops

                = Nematoscelis- s (small # 11 mm)

                = Nematoscelis- l (large > 11 mm)

Stylocheiron longicorne

Vibilia armata

 

 

4 - Références bibliographiques

 

à citer lors de l’utilisation de ces données

L’auteur souhaiterait être informé des résultats des études qui utiliseront ces données.

 

- Andersen, V., Nival, P., Capparoy, P., & A. Gubanova, 2001. Zooplankton community during the transition from spring bloom to oligotrophy in the open NW Mediterranean and effects of wind events. 1 - Abundance and specific composition. J. Plankton Res. 23, 227-242.

- Andersen, V., Gubanova, A., Nival, P. & T. Ruellet, 2001. Zooplankton community during the transition from spring bloom to oligotrophy in the open NW Mediterranean and effects of wind events. 2 - Vertical